Palabras clave
biofertilización
fósforo
Rhizophagus intraradices
Cómo citar
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- Cuatro recolectas de hongos micorrízicos arbusculares (HMA) se evaluaron en Leucaena leucocephala.
- Rhizophagus intraradices se evaluó como HMA de referencia.
- Los HMA mejoraron las características de la planta en comparación con el testigo y la fertilización.
- R. intraradices promovió mayor contenido de P y crecimiento en la parte aérea, y menor crecimiento de la raíz.
- Las recolectas “Caracoles” y “Rosario Izapa” desarrollaron mejores atributos de la planta que “Té limón” y “San Rafael”.
Resumen
Introducción: Leucaena leucocephala (Lam.) de Wit es nativa de América tropical. El sistema radical de la especie se asocia a microorganismos que mejoran la nutrición y el crecimiento.
Objetivo: Evaluar el efecto de recolectas de hongos micorrízicos arbusculares (HMA) sobre el contenido de fósforo (P) y crecimiento de L. leucocephala en vivero.
Materiales y métodos: Las semillas se sembraron y se aplicaron seis tratamientos: Rhizophagus intraradices (Schenck & Sm.) Walker & Schüßler (1), las recolectas “Caracoles” (2), “Rosario Izapa” (3), “Té limón” (4) y “San Rafael” (5), fertilización 15N-15P-15K (6) y un testigo. Las variables morfológicas y fisiológicas, colonización radical y contenido de P se registraron a los 120 días. Los datos se sometieron a un análisis de varianza y comparación de medias (Tukey, P ≤ 0.05).
Resultados y discusión: Los HMA mejoraron las características de la planta en comparación con el testigo y la fertilización. Rhizophagus intraradices causó los valores más altos de crecimiento en la parte aérea, colonización micorrízica y contenido de P, y el menor crecimiento en el sistema radical. Los aislamientos “Caracoles” y “Rosario Izapa” promovieron altura, biomasa de la raíz y contenido de P más altos que “Té limón” y “San Rafael”.
Conclusión: Los HMA permiten disminuir la fertilización química sin detrimento del crecimiento de L. leucocephala.
Citas
Aguirre-Medina, J. F. (2006). Biofertilizantes microbianos: Experiencias agronómicas del programa nacional del INIFAP en México. México: Instituto Nacional de Investigaciones Forestales, Agrícolas y Pecuarias - Centro de Investigaciones Regionales Pacífico Sur - Campo Experimental Rosario Izapa. Retrieved from http://biblioteca.inifap.gob.mx:8080/jspui/handle/123456789/3633
Aguirre-Medina, J. F., Aguirre-Cadena, J. F., Cadena-Iñiguez, J., & Avendaño-Arrazate, C. H. (2012). Biofertilización en plantas de la selva húmeda tropical (1.a ed.). México: Colegio de Postgraduados.
Aguirre-Medina, J. F., Kohashi-Shibata, J., Trejo-López, C., Acosta Gallegos, J. A., & Cadena-Iñiguez J. (2005). Inoculación de Phaseolus vulgaris L. con tres microorganismos y su efecto en tolerancia a sequía. Agricultura Técnica en México, 31, 125–137. Retrieved from http://www.redalyc.org/toc.oa?id=608&numero=10078
Aguirre-Medina, J. F., Mendoza-López, A., Cadena-Iñiguez, J., & Avendaño-Arrazate, C. H. (2007). La biofertilización del cacao (Theobroma cacao L.) en vivero con Azospirillum brasilense Tarrand, Krieg et Döbereiner y Glomus intraradices Schenk et Smith. Interciencia, 32(8), 1–6. Retrieved from http://www.redalyc.org/articulo.oa?id=33932808
Aguirre-Medina, J. F., Mina-Briones, F., Cadena-Iñiguez, O. J., Dardón-Zunun, J. D., & Hernández-Sedas, D. A. (2014). Crecimiento de Cedrela odorata L. biofertilizada con Rhizophagus intraradices y Azospirillum brasilense en vivero. Revista Chapingo Serie Ciencias Forestales y del Ambiente, 20(3), 177–186. doi: https://doi.org/10.5154/r.rchscfa.2014.01.001
Aguirre-Medina, J. F., Moroyoqui-Ovilla, D. M., Mendoza-López, A., Cadena-Iñiguez, J., Avendaño-Arrazate, C. H., & Aguirre-Cadena, J. F. (2011). Aplicación de A. brasilense y G. intraradices a Coffea arabica en vivero. Agronomía Mesoamericana, 22(1), 1–10. Retrieved from http://www.mag.go.cr/rev_meso/v22n01_071.pdf
Azcón, G. C., & Barea, J. M. (1980). Micorrizas. Investigación y Ciencia, 47, 8–16.
Daniell, T., Husband, J. R., Fitter, A. H., & Young, J. P. W. (2001). Molecular diversity of arbuscular mycorrhizal fungi colonizing arable crops. FEMS Microbiology Ecology 36(2-3), 203–209. doi: https://doi.org/10.1111/j.1574-6941.2001.tb00841.x
Dickson, A., Leaf, A. L., & Hosner, J. F. (1960). Quality appraisal of white spruce and white pine seedling stock in nurseries. Forestry Chronicle, 36, 10–13. Retrieved from http://pubs.cif-ifc.org/doi/pdf/10.5558/tfc36010-1
Doubková, P., Vlasáková, E., & Sudová, R. (2013). Arbuscular mycorrhizal symbiosis alleviates drought stress imposed on Knautia arvensis plants in serpentine soil. Plant Soil, 370, 149–161. doi: https://doi.org/10.1007/s11104-013-1610-7
García, A. E. (1973). Modificaciones al sistema de clasificación climática de Köppen para adaptarlas a las condiciones de la república mexicana (3a ed.). México. Universidad Nacional Autónoma de México.
Gerdemann, J. W., & Nicolson, T. H. (1963). Spores of mycorrhizal Endogone species extracted from the soil by wet sieving and decanting. Transactions of the British Mycological Society, 46(2), 235–244. doi: https://doi.org/10.1016/S0007-1536(63)80079-0
Grether, R., Martínez-Bernal, A., Luckow, M., & Zárate, S. (2006). Fascículo 44, Mimosaceae. In A. Novelo-Retana, R. Medina-Lemos, H. Ochoterena-Booth, G. A. Salazar-Chávez, & L. O. Alvarado-Cárdenas (Eds.), Flora del Valle de Tehuacán-Cuicatlán (1.a ed., pp. 1–108). México: UNAM. Retrieved from http://www.conabio.gob.mx/malezasdemexico/mimosaceae/leucaena-leucocephala/fichas/ficha.htm
Hernández, W., & Salas, E. (2009). La inoculación con Glomus fasciculatum en el crecimiento de cuatro especies forestales en vivero y campo. Agronomía Costarricense, 33(1), 17–30. Retrieved from http://www.latindex.ucr.ac.cr/agrocostar-33-1/agrocostar-33-1-02.pdf
Ibarra-Puón, J. C., Aguirre-Medina, J. F., Ley-De Coss, A., Cadena-Iñiguez, J., & Zavala-Mata, A. (2014). Inoculación de Coffea canephora (Pierre) ex Froehner con Rhizophagus intraradices (Schenck et Sm.) Walker et Schuessler y Azospirillum brasilense Tarrand, Krieg et Döbereiner en vivero. Revista Chapingo Serie Horticultura, 20(2), 201-213. doi: https://doi.org/10.5154/r.rchsh.2013.09.027
Instituto Nacional de Estadística, Geografía e Informática (INEGI). (2005). Marco geoestadístico municipal, versión 3.1. Prontuario de información geográfica municipal de los Estados Unidos Mexicanos. Retrieved from http://www3.inegi.org.mx/sistemas/mexicocifras/datos-geograficos/21/21158.pdf
Jäderlund, L., Arthurson, V., Granhall, U., & Jansson, J. K. (2008). Specific interactions between arbuscular mycorrhizal fungi and plant growth-promoting bacteria: as revealed by different combinations. FEMS Microbiol Letters, 287(2),174–180. doi: https://doi.org/10.1111/j.1574-6968.2008.01318.x
Jaizme-Vega, M. C. (2009). Las micorrizas. Una simbiosis de interés para la agricultura. Revista Vida Rural, 288, 40–52. Retrieved from http://www.mapama.gob.es/ministerio/pags/Biblioteca/Revistas/pdf_Vrural%2FVrural_2009_288_48_52.pdf
Jaizme-Vega, M. C., & Rodríguez-Romero, A. S. (2008). Integración de microorganismos benéficos (Hongos micorrícicos y bacterias rizosféricas) en agrosistemas de las Islas Canarias. Agroecología, 3, 33–39. Retrieved from http://revistas.um.es/agroecologia/article/view/95491/91801
Kanno, T., Saito, M., Ando, Y., Macedo, M. C. M., Nakamura, T., & Miranda, C. H. B. (2006). Importance of indigenous arbuscular mycorrhiza for growth and phosphorus uptake in tropical forage grasses growing on an acid, infertile soil from the Brazilian savannas. Tropical Grasslands, 40, 94–101. Retrieved from http://www.tropicalgrasslands.info/public/journals/4/Historic/Tropical%20Grasslands%20Journal%20archive/PDFs/Vol_40_2006/Vol_40_02_20
Leigh, J., Hodge, A., & Fitter, A. H. (2009). Arbuscular mycorrhizal fungi can transfer substantial amounts of nitrogen to their host plant from organic material. New Phytologist, 181, 199–207. doi: https://doi.org/10.1111/j.1469-8137.2008.02630.x
Moora, M., Öpik, M., Sen, R., & Zobel, M. (2004). Native arbuscular mycorrhizal fungal communities differentially influence the seedling performance of rare and common Pulsatilla species. Functional Ecology, 18(4), 554–562. doi: https://doi.org/10.1111/j.0269-8463.2004.00876.x
Offre, P., Pivato, B., Siblot, S., Gamalero, E., Corberand, T., Lemanceau, P., & Mougel, C. (2007). Identification of bacterial groups preferentially associated with mycorrhizal roots of Medicago truncatula. Applied and Environmental Microbiology, 73, 913–921. doi: https://doi.org/10.1128/AEM.02042-06
Phillips, J. M., & Hayman, D. J. (1970). Improved procedures for clearing and staining parasitic and vesicular-arbuscular mycorrhizal fungi for rapid assessment of infection. Transactions of the British Mycological Society, 55, 158–161. doi: https://doi.org/10.1016/S0007-1536(70)80110-3
Sanon, A., Andrianjaka, Z. N., Prin Y., Bally R., Thioulouse J., Comte, G., & Duponnois, R. (2009). Rhizosphere microbiota interfere with plant-plant interactions. Plant Soil, 321, 259–278. doi: https://doi.org/10.1007/s11104-009-0010-5
Serralde, O. A. M., & Ramírez, G. M. M. (2004). Análisis de poblaciones de micorrizas en maíz Zea mays cultivado en suelos ácidos bajo diferentes tratamientos agronómicos. Revista Corpoica, 5(1), 31–40. Retrieved from http://corpomail.corpoica.org.co/BACFILES/BACDIGITAL/48629/48629.pdf
Smith, S., Anderson, I., & Smith, F. (2015). Mycorrhizal associations and phosphorus acquisition: From cells to ecosystems. In W. C. Plaxton, & H. Lambers (Eds.), Annual plant reviews volume 48: Phosphorus metabolism in plants (pp. 409–440). USA: John Wiley & Sons. doi: https://doi.org/ 10.1002/9781118958841.ch14
Statistical Analysis System (SAS). (1999-2000). SAS/STAT user´s Guide: version 8.1. Cary NC, USA: Author.
Tewari, S. K., Katiyar, R. S., Ram, B., & Misra, P. N. (2004). Effect of age and season of harvesting on the growth, coppicing characteristics and biomass productivity of Leucaena leucocephala and Vitex negundo. Biomass and Bioenergy, 26, 229–234. doi: https://doi.org/10.1016/S0961-9534(03)00118-1
Wencomo, H. B., & Lugo, J. (2013). Rendimiento de materia seca y otros componentes en Leucaena leucocephala cv. Cunningham con el uso del Liplant. Pastos y Forrajes, 36(1), 43–49. Retrieved from http://www.redalyc.org/articulo.oa?id=269127587004
Yeung, P. K. K., Wong, F. T. W., & Wong, J. T. Y. (2002). Mimosine the allelochemical from the leguminous tree L. leucocephala, selectively enhances cell proliferation in dinoflagellates. Applied and Environmental Microbiology, 68, 5160– 5163. doi: https://doi.org/10.1128/AEM.68.10.5160-5163.2002
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